Catálogo / Sanidad

EIN-07588

SANL30 Técnico en inmunología

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Bonificable
hasta el 100%
Teleformación
Modalidad
Con tutor
Seguimiento experto
240 h
Duración

Descripción

En el ámbito de la sanidad, los técnicos en inmunología son de primordial importancia ya que conocen todo lo relacionado con los procedimientos que se llevan a cabo en un laboratorio clínico. Así, con el presente curso se pretende analizar las técnicas inmunológicas y bioquímicas de análisis y de separación, incluyendo las técnicas de identificación genética, empleadas en los laboratorios de Análisis Clínicos.

240 horas · Teleformación · con tutor. Formación bonificable para empresas vía FUNDAE.


Programa detallado

1. ORGANIZACIÓN Y GESTIÓN DE UN LABORATORIO

  • Documentación sanitaria.
    • Documentación clínica.
    • Documentación no clínica.
  • Organización jerárquica y departamental de un centro sanitario.
    • Organigramas de centros sanitarios.
    • Organigrama de un laboratorio.
    • Funciones del personal de un laboratorio.
  • Normas de seguridad en el trabajo referidas a los aparatos y las instalaciones de los laboratorios clínicos para la prevención de riesgos físicos y químicos.
  • Gestión de existencias.
    • Sistemas de almacenamiento.
    • Métodos de valoración de existencias.
    • Normas de seguridad e higiene en los almacenes de centros sanitarios.
  • Conservación de equipos.
    • Tipos de equipos de un laboratorio clínico.
    • Mantenimiento periódico de los equipos de laboratorio.
    • Medidas a tomar en caso de fallo de los equipos.
  • Aplicaciones informáticas.
    • Conocimientos básicos de informática.
    • Tipos y estructura de las bases de datos.
    • Aplicaciones informáticas de gestión y control de almacén.
  • Estadística básica.
    • Medidas de tendencia central.
    • Medidas de dispersión.
    • Representaciones gráficas de resultados.
  • Información científico_técnica.
    • Estructura de presentación de la información científica.
    • Búsqueda de información en bases de datos sanitarias.

2. TÉCNICAS DE PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS

  • Muestras biológicas humanas:
    • Concepto de espécimen y de muestra.
    • Características generales de la sangre.
  • * Diferencia entre sangre venosa y sangre capilar.
  • * Uso de sangre en ayunas.
  • * Utilización de suero o plasma.
  • * Hemólisis, lipemia o ictericia como fuentes de error.
  • * Anticoagulantes.
    • Características generales de la orina.
  • * Sustancias y elementos, formas analizables en muestras de orina.
    • Características generales de las heces.
    • Muestras seminales; LCR, líquidos serosos, exudados vaginales, exudados uretrales, exudados óticos, exudados conjuntivales y exudados nasofaríngeos; esputo y hemocultivos.
  • Obtención de muestras biológicas.
    • Obtención de plasma y suero.
    • Recogida de orina.
    • Recogida de heces.
  • Manipulación de las muestras biológicas.
    • Sistemas de transporte de las muestras.
    • Sistemas de recepción, identificación y distribución de las muestras.
    • Centrifugación de las muestras: fundamento de las técnicas de centrifugación.
    • Conservación de las muestras biológicas.
    • Normas de seguridad e higiene para la prevención de riesgos biológicos.
  • Cálculos en la realización de diluciones.
  • Normas de seguridad e higiene en la manipulación de muestras biológicas.

3. TÉCNICAS INMUNOLÓGICAS

  • Fisiología de la respuesta inmune.
    • Inmunidad celular.
    • Concepto de antígeno y formación de anticuerpos.
    • Reacción antígeno_anticuerpo.
    • Sistema de complemento.
    • Antígenos de histocompatibilidad.
    • Mecanismos de la respuesta inmune.
    • Autoinmunidad, inmunodeficiencia e hipersensibilidad.
  • Técnicas de análisis basadas en la precipitación y aglutinación de complejos antígeno_anticuerpo.
    • Precipitación en medio líquido.
    • Técnicas de precipitación en gel.
    • Técnicas de aglutinación con hematíes y látex.
    • Técnicas de inhibición de la aglutinación.
    • Fijación del complemento.
  • Inmunoensayos.
    • Radioinmunoensayos.
    • Enzimainmunoensayos.
    • Fluoroinmunoensayos.
    • Ensayos con marcadores quimioluminiscentes y bioluminiscentes.
  • Inmunofluorescencia.
    • Microscopio de fluorescencia.
    • Fluoróforos.
    • Inmunofluorescencia directa.
    • Inmunofluorescencia indirecta.
  • Control de calidad de las técnicas inmunológicas.
    • Controles internos y controles externos.
    • Programas de control de calidad.
    • Coeficientes de variación.
    • Gráficos de control de calidad.

4. TÉCNICAS DE DETERMINACIÓN DE METABOLITOS EN QUÍMICA CLÍNICA

  • Estructura, función y metabolismo de las sustancias analizables en el laboratorio de Química Clínica.
    • Estructura química y conceptos metabólicos básicos sobre glúcidos, lípidos y proteínas.
    • Enzimología clínica.
    • Fisiología del equilibrio hidroelectrolítico y ácido_base del organismo.
  • Espectrofotometría de absorción y dispersión.
    • Interacción de la radiación y la materia: absorción y dispersión de luz.
    • Ley de Lambert_Beer.
    • Transmitancia y absorbancia.
    • Componentes de un fotómetro y de un espectrofotómetro.
    • Cálculo de las concentraciones mediante el uso de patrones y curvas de calibrado.
    • Tipos de autoanalizadores utilizados en Bioquímica.
    • Nefelometría y turbidimetría.
  • Espectrofotometría de emisión y absorción atómica.
    • Fundamentos físicos de la fotometría de llama.
    • Componentes de un fotómetro de llama.
    • Fundamentos físicos de la espectrofotometría de absorción atómica.
    • Componentes de un espectrofotómetro de absorción atómica.
    • Uso de patrones en la espectrofotometría de absorción atómica.
  • Técnicas basadas en la detección de potenciales eléctricos.
    • Ecuación de Nernst.
    • Ecuación de Henderson_Hasselbach.
    • Determinación de concentraciones mediante electrodos.
    • Tipos de electrodos.
  • Control de calidad en Química Clínica.
    • Controles internos y controles externos.
    • Programas de control de calidad.
    • Coeficientes de variación.
    • Gráficos de control de calidad.

5. TÉCNICAS DE SEPARACIÓN EN BIOQUÍMICA

  • Electroforesis.
    • Fundamento teórico de la separación electroforética.
    • Componentes de un equipo de electroforesis.
    • Tipos de soporte.
    • Preparación de los soportes.
    • Aplicación de la muestra.
    • Revelado de las placas de electroforesis.
    • Densitometría.
  • Técnicas electroforéticas especiales.
    • Isoelectroenfoque.
    • Electroforesis en SDS.
    • Inmunoelectroforesis.
    • Electroinmunodifusión.
  • Cromatografía.
    • Fundamento teórico de las separaciones cromatográficas.
    • Clasificación de las técnicas cromatográficas.
    • Cromatografía en papel, cromatografía en capa fina y cromatografía en columna.
    • Definición y cálculo de los parámetros utilizados en las separaciones cromatográficas.
    • Mecanismos de separación.
    • Cromatógrafos empleados en HPLC y cromatografía de gases.
  • Determinación de fármacos y drogas de abuso.
    • Tipos/clasificación de fármacos y drogas de abuso.
    • Monitorización de fármacos terapéuticos.
    • Detección de drogas de abuso.
  • Control de calidad de las técnicas electroforéticas y cromatográficas.
    • Controles internos y controles externos.
    • Programas de control de calidad.
    • Coeficientes de variación.
    • Gráficos de control de calidad.

6. TÉCNICAS DE ANÁLISIS MOLECULAR

  • Estructura y función de los ácidos nucleicos.
    • Estructura del núcleo, la cromatina y los cromosomas.
    • El ácido desoxirribonucleico como material genético.
    • Desnaturalización del ADN.
    • Replicación, transcripción y traducción de la información genética.
    • Principios básicos de la regulación genética.
    • Alteraciones en el ADN: mutaciones.
  • Objetivos y técnicas de los estudios cromosómicos.
    • Cultivos de linfocitos y de fibroblastos.
    • Preparación de las muestras.
    • Microfotografías e identificación de los cromosomas.
  • Técnicas básicas en el diagnóstico molecular.
    • Electroforesis de ácidos nucleicos.
    • Sondas genéticas. Técnicas de marcado de sondas.
    • Técnicas de transferencia e hibridación de ácidos nucleicos y proteínas: Southern, Northern y Western “blotting”, “Dot Blot” e Hibridación “in situ”.
    • Enzimas de restricción y técnicas de ruptura inespecífica de ADN.
    • Tecnología del ADN recombinante.
    • ADNc.
    • Amplificación mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
    • Análisis de secuencias de ADN.
    • Transferencia de ADN a células eucariotas.
  • Aplicación de la genética molecular a:
    • Aplicación de la genética molecular al diagnóstico de enfermedades hereditarias.
  • * Análisis molecular directo e indirecto.
  • * Ejemplos de patologías estudiadas mediante técnicas de genética molecular.
    • Aplicación de la genética molecular al estudio de enfermedades genéticas adquiridas (cáncer).
  • * Funciones de los oncogenes y factores de crecimiento.
  • * Genes de familia ras.
    • Aplicación de la genética molecular al estudio de las patologías infecciosas.
    • Aplicaciones de la genética molecular en medicina legal y forense.

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